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    黄经理

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    上海 奉贤区

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    试剂、抗体、细胞库 / 细胞培养、ELISA 试剂盒、耗材、体外诊断、实验室仪器 / 设备、技术服务

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技术资料/正文

猪源性成分(Porcine)核酸检测试剂盒(荧光 PCR 法)产品手册

55 人阅读发布时间:2026-05-13 15:47

产品名称:猪源性成分(Porcine)核酸检测试剂盒(荧光PCR 法)

Name     Porcine derived ingredients Detection Kit (Real-Time PCR Method)

【包装规格】50T/

【预期用途】

动物源性成分广泛分布于食品、饲料、化妆品等,与人们的生活息息相关,其中食品和饲料所占的比例最   大。肉及肉制品掺假成为世界各国共同关注的热点问题,肉食品及其饲料的安全隐患直接关系到人类的安危。    近几十年来,以 PCR 技术为核心的动物源性成分检测获得了广泛应用。

本试剂盒适用于动物组织以及食品、饲料等样本中猪源性成分的检测。

【检验原理】

本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术,设计一对猪源性成分基因保守区特异性引物[1],结合一条特异性探针,用荧光 PCR 技术对猪源性成分基因保守区的 DNA 进行体外扩增检测,从而达到快速检测之目的 用于对可疑感染病料的病原学检测。

【试剂组成】

包装规格

50T/

Porcine 反应液

500μL×2

酶液

50μL×1

Porcine 阳性质控品

50μL ×1

阴性质控品

250μL ×1

说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用。

【储存条件及有效期】

-20±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。

【适用仪器】

ABI7500、安捷伦 MX3000P/3005PLightCyclerBio-RadEppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。

【标本采集】

取动物组织及其制品、食品或饲料约 1g

【保存和运输】

采集或处理好的样品在 2~8℃条件下保存应不超过 24 h;若需长期保存,应放置-70℃以下保存,冻融不超过 3 次。

【使用方法】

1.  样品处理样本处理区

1.1  样本前处理

对于饲料样品,按照《GB/T 14699.1-2005 饲料 采样》进行采样及处理。

取动物组织及其制品、食品,手术剪剪碎混匀后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨, 待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中,8000rpm 离心 2min,取上清液 100μL 1.5mL 灭菌离心管中。

1.2  核酸提取

推荐采用上海烜雅生物科技有限公司生产的核酸提取试剂(离心柱法)进行核酸提取,请按照试剂说明书进行操作。

2.  试剂配制(试剂准备区)

根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;样品每满

10 份,多配制 1 ),每测试反应体系配制如下表:

试剂

Porcine 反应液

酶液

用量(样本数为 N

19μL

1μL

将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,20uL/管。

3.  加样(样本处理区)

将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀, 短暂离心。

4.  PCR 扩增(核酸扩增区)

4.1  将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;

4.2  设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL

 

荧光通道选择: 检测通道(Reporter DyeFAM, 淬灭通道(Quencher DyeNONEABI 系列仪器请勿选择

ROX 参比荧光,选择 None 即可。

4.3  推荐循环参数设置:

步骤

循环数

温度

时间

收集荧光信号

1

1 cycle

95

2min

2

40 cycle

95

15sec

60

30sec

5.  结果分析判定

5.1  结果分析条件设定(请参照各仪器使用说明书进行设置,以分析 ABI7500 仪器为例)

反应结束后自动保存结果,根据分析后图像调节 Baseline Start 值、End 值以及 Threshold (用户可根据实际情况自行调整,Start 值可设在 315End 值可设在 520,使阈值线位于扩增曲线指数期,阴性质控品的扩增曲线平直或低于阈值线,点击 Analyze 自动获得分析结果。

5.2  结果判断

阳性:检测通道 Ct ≤35,且曲线有明显的指数增长曲线; 阴性:样本检测结果 Ct >35 或无 Ct 值。

5.3  质控标准

阴性质控品:无特异性扩增曲线或无 Ct 值显示;

阳性质控品:扩增曲线有明显指数增长期,且 Ct ≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。

6.  检测方法的局限性

1. 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;

2. 样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;

3. 阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;

4. 病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;

5. 不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;

6. 试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;

7. 本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。

【注意事项】

1. 所有操作严格按照说明书进行;

2. 试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;

3. 反应液应避光保存;

4. 反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;

5. 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;

6. 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;

7. 实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;

8. 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

【参考文献】

[1]商务部. SB/T 10923-2012 肉及肉制品中动物源性成分的测定实时荧光 PCR [S]. 北京:中国标准出版社, 2012.

资料格式:

猪源性成分(Porcine)核酸检测试剂盒(荧光PCR法)行标(SBT 10923-2012).docx

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